周启涛生物技术工作室
多组学与方法2025/11/26· 编译自 Nature

IF50.5|抑制剂如何借天然降解通路加速激酶清除

大规模激酶降解图谱揭示抑制剂诱导降解的普遍性,并解析出三条全新机制。

大规模激酶降解图谱揭示抑制剂诱导降解的普遍性,并解析出三条全新机制。

这篇按生信解读号的读法拆:先看背景和问题,再看作者怎么做、做出了哪几条硬发现,最后把数据和代码收走。

研究背景

靶向蛋白降解是近年药理学热点,PROTAC和分子胶通过拉近靶蛋白与E3泛素连接酶实现降解。但零星报道显示,某些抑制剂本身也能诱导靶蛋白不稳定,尤其在激酶抑制剂中反复出现。许多激酶依赖HSP90等分子伴侣维持折叠与稳定,抑制剂结合后可能破坏激酶-伴侣互作,导致“伴侣剥夺”式降解,如neratinib降解HER2。然而,也有案例表明机制超出伴侣剥夺框架,如taselisib和inavolisib对突变PI3Kα的选择性降解涉及网络效应。由于激酶抑制剂在临床中应用广泛(80个FDA批准药物,另有180个在临床试验),系统理解抑制剂诱导降解的频率、规律和机制,对药物开发、解释副作用及设计新型降解剂均有重要意义。

科学问题

卡在哪里: 此前抑制剂诱导激酶降解的发现多为偶然,缺乏系统性图谱。哪些激酶易被降解?哪些抑制剂具有降解活性?降解是否依赖直接结合还是网络效应?降解机制是否仅限于伴侣剥夺?这些问题均无定量答案。

本文要回答: 本文旨在系统绘制激酶抑制剂诱导降解的图谱,并深入解析代表性案例的分子机制,提炼出超越伴侣剥夺的统一逻辑。

技术路线

作者主要用了:大规模发光报告子筛选、CRISPR–Cas9筛选、BioID、定量蛋白质组、高内涵成像

作者构建了98个激酶(88个野生型+10个突变型)的Nluc融合报告子稳定细胞系,用1570个激酶抑制剂进行动态处理(2-18小时),通过发光信号监测激酶丰度变化。同时设置GFP-Nluc和dGFP-Nluc对照以排除转录/翻译全局干扰。通过多级评分系统识别出232个化合物可下调至少一个激酶,涉及66个激酶,其中160对激酶-化合物组合被判定为选择性降解事件。随后,作者挑选三个HSP90依赖程度不同的激酶(LYN、BLK、RIPK2)进行深入机制解析,综合运用CRISPR筛选、BioID邻近标记、定量蛋白质组和成像技术,揭示抑制剂如何“超充”内源性降解通路。

Fig. 1 · 原文图,按文末许可署名使用
Fig. 1 · 原文图,按文末许可署名使用

图 1 Fig. 1。图1展示KinDeg图谱的总体设计:左上为分析的激酶组成(88个经典+10个突变),右上为药物筛选设置,中间为数据处理和命中判定流程,底部为激酶树状图展示降解事件分布。关键信息:160个选择性激酶-化合物对,HSP90客户富集,突变与野生型降解模式差异大。

核心亮点

亮点 1|激酶降解图谱揭示普遍性与HSP90富集

在1570个抑制剂中,232个化合物可下调至少一个激酶,覆盖66个激酶(含7个突变型),共160对选择性降解事件。HER2、ABL1和RAF1(S257L)最常被降解。降解倾向与PROTAC可降解性无相关性,但与HSP90客户状态显著相关:强/弱客户比非客户更易被降解。突变激酶的降解模式与野生型差异大(Jaccard距离≥0.8),且降解频率不完全由蛋白半衰期决定。此外,还发现多个抑制剂诱导的稳定化事件,如ABL1被变构抑制剂稳定。

Fig. 2 · 原文图,按文末许可署名使用
Fig. 2 · 原文图,按文末许可署名使用

图 2 Fig. 2。图2聚焦LYN降解机制:a为流式稳定性报告子验证SI-3诱导LYN降解;b-c为内源LYN的剂量和时间依赖性降解;d为化学拯救实验显示降解依赖泛素化但不依赖CRL或单一降解途径;e为UPS聚焦CRISPR筛选结果,CBL为最强富集基因;f为BioID显示CBL被招募;g为CBL/CBLB双敲拯救降解;h为化学蛋白质组显示CSK为最有效靶点;i为CSK门控突变拯救降解;j为LYN(Y32A/Y316A)双突变抵抗降解。

亮点 2|SI-3通过抑制CSK超充LYN降解

SI-3在纳摩尔浓度下快速降解LYN,依赖CBL和CBLB双E3连接酶,但不依赖CRL或HSP90。CRISPR筛选和BioID均指向CBL为关键效应子,但单敲CBL或CBLB不能完全阻断降解,双敲才能完全拯救。化学蛋白质组显示SI-3最有效靶点是CSK而非LYN,且过表达CSK门控突变体可拯救降解,表明SI-3通过抑制CSK间接激活LYN,暴露磷酸化降解子(Tyr32和Tyr316),从而被CBL/CBLB识别并清除。

Fig. 3 · 原文图,按文末许可署名使用
Fig. 3 · 原文图,按文末许可署名使用

图 3 Fig. 3。图3展示BLK降解机制:a为TAK285处理的表达蛋白质组,BLK是唯一显著下调激酶;b为全基因组CRISPR筛选,γ-分泌酶四个亚基均富集;c为DAPT预处理阻断TAK285诱导的BLK降解;d为点击化学显示TAK285诱导γ-分泌酶依赖的BLK去豆蔻酰化;e为结构域交换实验证明BLK N端独特结构域决定降解特异性;f-g为深度突变扫描和截短实验确定最小降解基序;h为SRC中引入BLK关键残基获得TAK285敏感性;i为AlphaFold3预测的BLK-γ-分泌酶复合物模型。

亮点 3|TAK285诱导γ-分泌酶切割BLK豆蔻酰化锚

TAK285诱导BLK降解依赖γ-分泌酶,但不依赖直接结合BLK或γ-分泌酶。机制上,TAK285通过未知网络效应促使γ-分泌酶切割BLK N端豆蔻酰化甘氨酸,导致BLK从膜上解离进入胞质,在胞质中不稳定而降解。BLK N端前7个氨基酸(尤其是Gly2、Leu3、Val4、Ser6)是降解决定序列,其中Gly2突变影响豆蔻酰化,Leu3/Val4突变特异性阻断TAK285诱导的降解。AlphaFold3预测显示BLK N端插入γ-分泌酶活性位点,催化残基Asp385/Asp275协调切割豆蔻酰化甘氨酸。

Fig. 4 · 原文图,按文末许可署名使用
Fig. 4 · 原文图,按文末许可署名使用

图 4 Fig. 4。图4展示RIPK2降解机制:a-b为流式稳定性报告子验证RI-4诱导RIPK2降解;c为内源RIPK2降解;d为全基因组CRISPR筛选,溶酶体相关基因和TMUB1富集;e为BafA1拯救降解;f-g为FIP200敲除阻断降解,PSMB5敲除无影响;h-j为显微镜显示RI-4诱导RIPK2形成CARD依赖的 foci;k为BioID显示RI-4诱导RIPK2与p62、TNFAIP3等互作;l-m为免疫沉淀和免疫荧光证实RI-4诱导RIPK2与TMUB1互作。

亮点 4|RI-4诱导RIPK2形成类RIPosome并经自噬降解

RI-4诱导RIPK2形成CARD依赖的高阶组装体(类RIPosome),随后通过巨自噬途径降解。CRISPR筛选富集溶酶体相关基因及TMUB1。RI-4诱导的组装体形成依赖TMUB1,且与cIAP1和XIAP相互作用,RIPK2(I212D)突变或双敲BIRC2/XIAP可阻断清除。BioID显示RI-4处理后RIPK2与p62、TNFAIP3、CYLD等自噬和泛素相关因子互作增强。该机制模拟了病原体诱导的RIPosome形成与清除,表明抑制剂可“超充”天然免疫信号中的降解通路。

生信可带走

这一块是给做分析的人用的,不是科普点缀。

  • 方法栈: 大规模发光报告子筛选、CRISPR–Cas9筛选、BioID、定量蛋白质组、高内涵成像
  • 公开数据: 原文未给出公开组学登录号
  • 代码: 原文未给出公开 GitHub/GitLab 仓库
  • 谁该点开原文: 从事靶向蛋白降解、激酶信号转导或药物机制研究的科研人员与生信分析师。

带走一句

抑制剂诱导降解并非偶然,而是可被系统预测和利用的规律。做激酶抑制剂表型分析时,应同时监测靶蛋白丰度变化,并考虑网络效应和天然降解通路的参与。

本页供学习交流,不替代原文,也不代表原作者、期刊或资助方立场。引用科学结论请以正式发表版本为准。 图表按 CC BY(可转载,需署名) 使用。 版权声明

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