周启涛生物技术工作室
神经科学2025/11/05· 编译自 Nature

IF50.5|PU.1下调驱动小胶质细胞淋巴样基因表达与神经保护

小胶质细胞接触斑块后PU.1下调,表达CD28等淋巴样受体,抑制神经炎症并减轻AD病理。

小胶质细胞接触斑块后PU.1下调,表达CD28等淋巴样受体,抑制神经炎症并减轻AD病理。

这篇按生信解读号的读法拆:先看背景和问题,再看作者怎么做、做出了哪几条硬发现,最后把数据和代码收走。

研究背景

阿尔茨海默病(AD)中,小胶质细胞对淀粉样斑块的反应可从神经保护到神经毒性。既往研究已鉴定出疾病相关小胶质细胞(DAM)等状态,并发现PU.1(由SPI1编码)作为髓系/淋巴系主调控因子,其表达水平与AD风险相关。人类遗传学显示,SPI1 3'UTR区变异降低PU.1表达,与延迟发病和减轻严重程度相关。然而,PU.1在AD小胶质细胞中的动态变化及其功能后果尚不清楚。本研究利用5xFAD小鼠模型和人类样本,探究PU.1表达异质性、调控机制及其对小胶质细胞表型和疾病进展的影响。

科学问题

卡在哪里: 此前研究多聚焦于DAM的整体转录特征,但未明确PU.1表达异质性是否定义功能不同的亚群,也未阐明PU.1下调是否直接驱动神经保护性小胶质细胞状态。此外,小胶质细胞表达淋巴样受体蛋白的生物学意义未知。

本文要回答: 本文旨在揭示PU.1下调在小胶质细胞神经保护功能中的作用,鉴定关键下游淋巴样受体(如CD28),并验证其在AD病理中的因果效应。

技术路线

作者主要用了:snRNA-seq、scRNA-seq、空间转录组(MERFISH)、ATAC-seq、TRAP-seq、免疫荧光、行为学

作者首先利用5xFAD小鼠和人类AD样本的snRNA-seq及免疫荧光,鉴定出斑块相关PU.1low小胶质细胞亚群,并通过谱系示踪确认其小胶质细胞身份。随后,利用SYK/PLCγ2敲除和体外配体刺激实验,证明PU.1下调由斑块相关受体信号驱动。为验证因果性,构建了PU.1-low和PU.1-high转基因小鼠,结合多组学分析揭示PU.1下调足以诱导淋巴样基因表达和染色质可及性改变。最后,通过CD28条件性敲除和功能实验,证明CD28+PU.1low小胶质细胞抑制神经炎症并减轻AD病理。

Fig. 1 · 原文图,按文末许可署名使用
Fig. 1 · 原文图,按文末许可署名使用

图 1 Fig. 1。图1展示PU.1low小胶质细胞亚群的鉴定与定位。a图UMAP显示8月龄野生型和5xFAD小鼠前脑小胶质细胞中PU.1表达状态(PU.1low/med/high),红色DAM亚群内存在PU.1low细胞。b、c图免疫荧光显示6月龄5xFAD小鼠和人类AD额叶皮层中斑块相关小胶质细胞PU.1蛋白降低,柱状图量化PU.1low细胞比例。d、e图显示CSF1R抑制剂处理后PU.1low细胞仍存活,且谱系示踪确认其小胶质细胞身份。f图显示SYK或PLCγ2敲除减少PU.1low细胞数量。

核心亮点

亮点 1|PU.1low小胶质细胞是斑块相关亚群

在8月龄5xFAD小鼠和人类AD额叶皮层中,作者发现斑块相关小胶质细胞中存在PU.1low亚群,其比例随疾病进展增加。该亚群不依赖CSF1R生存,且谱系示踪证实其为真正的小胶质细胞。SYK或PLCγ2敲除减少PU.1low细胞数量,体外TREM2或CLEC7A配体刺激可下调PU.1,表明斑块相关受体信号驱动PU.1下调。

Fig. 2 · 原文图,按文末许可署名使用
Fig. 2 · 原文图,按文末许可署名使用

图 2 Fig. 2。图2展示PU.1low DAM的淋巴样基因表达特征。a图火山图显示PU.1low vs PU.1high DAM差异基因,点图突出淋巴样基因(Cd28、Pdcd1等)在PU.1low中上调。b、c图MERFISH空间图像和UMAP显示PU.1low淋巴样基因表达的小胶质细胞定位于淀粉样斑块附近。d图TRAP-seq证实这些转录本与核糖体结合。e图人类AD小胶质细胞scRNA-seq也显示淋巴样基因表达。

亮点 2|PU.1low小胶质细胞表达淋巴样基因

scRNA-seq、snRNA-seq和MERFISH显示,PU.1low斑块相关小胶质细胞上调CD28、Pdcd1、Cd274、CD5等淋巴样受体基因。TRAP-seq证实这些转录本与核糖体结合,提示蛋白翻译。人类AD小胶质细胞中也观察到类似淋巴样基因表达。PU.1-low小鼠在无病理情况下即可重现该淋巴样基因特征,且ATAC-seq显示染色质可及性向T细胞样状态偏移。

Fig. 3 · 原文图,按文末许可署名使用
Fig. 3 · 原文图,按文末许可署名使用

图 3 Fig. 3。图3展示PU.1剂量调控小胶质细胞淋巴样基因表达。a图免疫荧光显示PU.1蛋白水平与Spi1基因拷贝数相关,柱状图量化PU.1-low、PU.1-wt和PU.1-high小鼠皮层小胶质细胞PU.1强度。b图显示PU.1-low小鼠小胶质细胞上调淋巴样基因,而PU.1-high小鼠呈促炎表型。c、d图ATAC-seq显示PU.1-low小胶质细胞染色质可及性向T细胞样状态偏移,且CD28位点可及性增加。

亮点 3|PU.1下调减轻AD病理并保护认知

在5xFAD背景下,PU.1-low小鼠斑块相关小胶质细胞数量增加,CD28+细胞比例升高,I型干扰素和补体基因表达降低,脂滴积累减少。淀粉样斑块负荷降低、斑块更致密,Tau扩散减少。突触标记物(Bassoon+、VGLUT2+)保留,海马LTP改善,开放场和新物体识别行为缺陷恢复,且生存期延长。

Fig. 4 · 原文图,按文末许可署名使用
Fig. 4 · 原文图,按文末许可署名使用

图 4 Fig. 4。图4展示PU.1下调对AD病理和认知的保护作用。a、b图MERFISH UMAP和柱状图显示5xFAD–PU.1-low小鼠斑块相关和CD28+小胶质细胞比例增加。c-f图免疫荧光和定量显示斑块相关小胶质细胞数量增加、CD28+细胞增多、I型干扰素和补体蛋白降低、淀粉样斑块负荷减少。g图显示Tau扩散减少。h-k图显示突触标记物保留、LTP改善、行为学恢复。l图显示生存期延长。

亮点 4|CD28+PU.1low小胶质细胞抑制神经炎症

CD28在5xFAD小胶质细胞中仅少量表达,但条件性敲除CD28导致斑块负荷增加,约30%小胶质细胞出现广泛I型干扰素炎症反应,远超CD28+细胞比例,提示CD28+PU.1low小胶质细胞可能通过反式调控抑制周围小胶质细胞的炎症激活。TIM-3缺陷小鼠中保护性小胶质细胞群也高表达CD28和低表达PU.1,支持该机制。

Fig. 5 · 原文图,按文末许可署名使用
Fig. 5 · 原文图,按文末许可署名使用

图 5 Fig. 5。图5展示CD28在PU.1low小胶质细胞神经保护中的关键作用。a图UMAP和点图显示5xFAD DAM中CD28+小胶质细胞比例。b图免疫荧光显示CD28条件性敲除小鼠中CD28蛋白缺失。c图显示CD28敲除增加斑块负荷。d、e图scRNA-seq显示CD28敲除导致约30%小胶质细胞出现I型干扰素炎症反应。f、g图人类数据表明SPI1保护性变异携带者中淋巴样小胶质细胞亚群(Mic.13)丰度增加。

亮点 5|人类SPI1保护性变异与淋巴样小胶质细胞增加相关

分析大样本人类小胶质细胞snRNA-seq数据发现,携带SPI1降低变异(rs1057233 GG/GA)的个体中,淋巴样基因表达的小胶质细胞亚群(Mic.13)丰度增加,与先前报道的认知改善和AD严重程度降低一致,提示该保护机制在人类中保守。

生信可带走

这一块是给做分析的人用的,不是科普点缀。

  • 方法栈: snRNA-seq、scRNA-seq、空间转录组(MERFISH)、ATAC-seq、TRAP-seq、免疫荧光、行为学
  • 公开数据: 原文未给出公开组学登录号
  • 代码: 原文未给出公开 GitHub/GitLab 仓库
  • 谁该点开原文: 关注神经免疫、小胶质细胞生物学、AD病理机制及单细胞多组学分析的研究者。

带走一句

小胶质细胞的保护性状态由PU.1剂量调控,下调PU.1可诱导淋巴样受体表达并抑制神经炎症,为AD免疫治疗提供新靶点。

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