周启涛生物技术工作室
发育与进化2024/09/02· 编译自 Nature Biotechnology

IF46.9|人iPS细胞分化出可长期多系重建的造血干细胞

无需转基因,仅靠时序性生长因子调控即可从iPS细胞获得可移植的造血干细胞。

无需转基因,仅靠时序性生长因子调控即可从iPS细胞获得可移植的造血干细胞。

这篇按生信解读号的读法拆:先看背景和问题,再看作者怎么做、做出了哪几条硬发现,最后把数据和代码收走。

研究背景

人多能干细胞(PS细胞)定向分化为具有长期多系重建能力的造血干细胞(HSC)是再生医学的重要目标。胚胎发育中,HSC起源于主动脉-性腺-中肾(AGM)区的生血内皮,经历内皮-造血转化(EHT)产生。既往研究通过转录因子过表达或与基质细胞共培养等方法,虽能获得部分造血细胞,但长期多系重建能力有限,且机制不清。单细胞转录组分析揭示AGM区HSC具有独特的HOXA基因表达特征,为体外分化提供了分子标志。然而,如何在化学成分明确的培养体系中,通过时序性调控信号通路,重现胚胎HSC发育的微环境,仍是领域内亟待解决的难题。

科学问题

卡在哪里: 此前从iPS细胞分化获得的造血细胞大多缺乏长期多系重建能力,或依赖外源转录因子过表达,且分化体系常含血清等不确定成分,难以解析关键信号通路。

本文要回答: 建立一种化学成分明确、无需转基因的分化方案,从人iPS细胞高效产生具有长期多系重建能力的造血干细胞。

技术路线

作者主要用了:scRNA-seq、流式细胞术、免疫缺陷小鼠移植模型、ACTINN机器学习分类

作者采用旋转培养的拟胚体(EB)分化体系,通过分阶段添加小分子和生长因子模拟胚胎造血发育:先用CHIR99021和Activin A诱导中胚层,再用CHIR99021和SB431542促进HOXA基因表达,随后用BMP4、VEGF和视黄酸前体(RETA)诱导生血内皮,最后撤除VEGF促进内皮-造血转化。分化第14-16天收获悬浮的CD34+细胞,冻存后经尾静脉移植到NBSGW免疫缺陷小鼠,评估长期多系重建能力。同时利用scRNA-seq解析分化细胞与胚胎AGM区HSC的转录组相似性,并通过机器学习算法ACTINN进行细胞类型注释。

Fig. 1 · 原文图,按文末许可署名使用
Fig. 1 · 原文图,按文末许可署名使用

图 1 Fig. 1。图1展示旋转EB分化方案及第14天造血细胞表型。a为分化阶段示意图,从iPS细胞经中胚层、生血内皮到造血细胞。b显示第7天培养皿中大量旋转EB。c为明场与荧光叠加图像,显示EB表面突出的细胞簇(类似主动脉内造血簇)及脱落到培养基中的血细胞。d为第14天悬浮细胞流式图,显示CD34+CD90+CD44+Kit+细胞占多数。e为EB解离后细胞流式图,包含基质、内皮和未脱落的造血细胞,其中少量表达CXCR4或CD73,提示近期来自内皮。

核心亮点

亮点 1|视黄酸时序调控决定iHSC产生

在筛选实验中,作者发现分化第3-5天添加视黄酸前体(ROL或RETA)是获得多系重建细胞的关键。在134只移植小鼠中,接受4μM CHIR99021诱导中胚层并联合视黄酸处理的细胞,有17.6%(9/51)出现多系重建,而未加视黄酸的组别无重建。scRNA-seq显示,视黄酸处理上调CYP26B1、DHRS3、CRABP2等视黄酸代谢基因及Wnt/FGF信号调节因子,且长时间处理(至第11天以上)才能充分激活这些基因。功能实验进一步表明,视黄酸处理至第13天时,多系重建率最高(36.8%),但处理至第15天反而下降,提示视黄酸信号需严格时序调控。

Fig. 2 · 原文图,按文末许可署名使用
Fig. 2 · 原文图,按文末许可署名使用

图 2 Fig. 2。图2展示筛选方案1及移植工作流程。a为分化条件矩阵,显示不同CHIR、BMP4、Activin A浓度及是否添加视黄酸。b为移植流程:从悬浮细胞和EB中分离CD34+细胞,冻存后尾静脉注射NBSGW小鼠。c-f为移植结果汇总,显示仅当使用4μM CHIR且添加视黄酸时出现多系重建,且重建水平与视黄酸处理相关。

亮点 2|iHSC转录组与胚胎AGM区HSC高度相似

对分化第14天的细胞进行scRNA-seq,共获得252,607个细胞。聚类分析鉴定出HLF+SPINK2+的HSC样群体,其表达RUNX1、MECOM、MLLT3、HLF、HOXA9等HSC特征基因。与人类胚胎CS14-CS15期AGM区HSC比较,iPS细胞来源的HLF+SPINK2+细胞在9个基因集评分上高度一致。机器学习算法ACTINN将大部分iPS来源的HSC样细胞归类为CS14-CS15 AGM HSPC,且视黄酸处理时间越长,归类为AGM HSPC的比例越高。

Fig. 3 · 原文图,按文末许可署名使用
Fig. 3 · 原文图,按文末许可署名使用

图 3 Fig. 3。图3展示scRNA-seq实验设计及转录组分析。a为分化方案,两个iPS细胞系(RM TOM和PB1.1 BFP)在两种中胚层诱导条件下,接受不同时长的RETA处理。b-e为UMAP图,显示整合后的细胞聚类,鉴定出基质、内皮、生血内皮和造血细胞群。f为HSC特征基因在HLF+SPINK2+细胞中的表达。g为iPS来源HLF+SPINK2+细胞与胚胎CS14-CS15 AGM区HSC的基因表达比较。h为ACTINN分类结果,显示iPS来源HSC样细胞主要归类为CS14-CS15 AGM HSPC,且RETA处理时间越长,该比例越高。

亮点 3|VEGF撤除增强内皮-造血转化和重建能力

作者发现,在分化第3-7天使用高浓度VEGF(150 ng/ml)可促进动脉内皮生成,但持续存在会抑制RUNX1表达和EHT。在第7天撤除VEGF后,CD34+CXCR4+动脉内皮细胞迅速失去CXCR4,同时RUNX1和HLF表达上调,表明EHT加速。将这一改良方案(protocol 3)用于移植实验,RM TOM细胞系的多系重建率从之前的24%提高到48.4%(30/62),且另外三个iPS细胞系(PB1.1 BFP、PB5.1、PB10.5)也获得26.7%-47.8%的多系重建率。

Fig. 4 · 原文图,按文末许可署名使用
Fig. 4 · 原文图,按文末许可署名使用

图 4 Fig. 4。图4展示筛选方案2及移植结果。a为分化方案,显示不同RETA处理时长(第3-5天、3-7天、3-9天、3-13天、3-15天)。b为散点图,显示骨髓中人源细胞比例与RETA处理时长的关系,第3-13天处理组多系重建率最高(36.8%)。c-g为多系重建小鼠的组织分析,包括骨髓中TOM+细胞共聚焦图像、骨髓和脾脏中红系、髓系、B细胞和T细胞的流式图,以及胸腺中T细胞发育阶段的流式图。

亮点 4|iHSC移植后建立骨髓HSC龛并支持二次移植

在多系重建小鼠的骨髓中检测到CD45+CD34+CD38lo/-的HSC样细胞,表明iHSC能在体内建立干细胞龛。将原代移植小鼠的骨髓细胞二次移植到NBSGW小鼠,6/12只iHSC移植小鼠出现二次重建,但水平较低且多为髓系限制性;脐带血移植小鼠的二次重建率相似(2/5),提示iHSC与脐带血HSC在自我更新能力上相当,但可能弱于胚胎AGM来源的HSC。

Fig. 5 · 原文图,按文末许可署名使用
Fig. 5 · 原文图,按文末许可署名使用

图 5 Fig. 5。图5展示protocol 3分化方案及四个iPS细胞系的移植结果。a-d为四个细胞系(RM TOM、PB1.1 BFP、PB5.1、PB10.5)移植后骨髓和脾脏的重建水平及谱系分布。e-h为12周和16周时外周血中人源细胞比例的变化。i为骨髓中GYPA+红系和CD45+淋巴/髓系细胞的流式图。j为胸腺或纵隔淋巴结中T细胞和B细胞的流式图,显示CD4+CD8+双阳性细胞比例较低。

亮点 5|iHSC重建水平与脐带血HSC相当

作者将iHSC与脐带血单个核细胞进行平行移植比较。脐带血中CD34+细胞频率为0.7-2.7%,当移植超过6,000个CD34+细胞时,14/15只小鼠出现多系重建。iHSC移植后,骨髓中人源细胞比例可达25-50%,部分小鼠超过70%,且在外周血中可持续增加至24周。极限稀释分析估计iHSC频率约为1/3×10^6 CD34+细胞,而脐带血HSC频率约为1/6.3×10^3 CD34+细胞,相差约20倍。

生信可带走

这一块是给做分析的人用的,不是科普点缀。

  • 方法栈: scRNA-seq、流式细胞术、免疫缺陷小鼠移植模型、ACTINN机器学习分类
  • 公开数据: 原文未给出公开组学登录号
  • 代码: 原文未给出公开 GitHub/GitLab 仓库
  • 谁该点开原文: 从事造血发育、干细胞分化或再生医学研究的科研人员,尤其是关注iPS细胞定向分化和移植模型的团队。

带走一句

时序性调控Wnt、视黄酸和VEGF信号,无需转基因即可从iPS细胞获得功能性HSC,为解析HSC发育机制和临床转化提供了可操作的平台。

本页供学习交流,不替代原文,也不代表原作者、期刊或资助方立场。引用科学结论请以正式发表版本为准。 图表按 CC BY(可转载,需署名) 使用。 版权声明

微信二维码

需要同类分析?扫码加微信,一对一沟通需求,交付后终身售后。

添加微信

需要同类分析?扫码加微信,一对一沟通需求,交付后终身售后。